在成功獲取並培養(yang) 了後，接下來進入實驗操作的核心階段。首先，我們(men) 需要對細胞進行傳(chuan) 代處理，以確保實驗所需細胞量的充足及細胞活力的維持。具體(ti) 操作如下：

1. **準備培養(yang) 基與(yu) 試劑**：確保新鮮的培養(yang) 基（如RPMI-1640培養(yang) 基）已預熱至37℃，並含有10%胎牛血清及必要的抗生素（如青黴素和鏈黴素），以防汙染。同時，準備胰蛋白酶-EDTA溶液用於(yu) 細胞消化。

2. **細胞消化**：在顯微鏡下觀察FaDu細胞生長情況，當細胞密度達到約80%-90%時，吸去舊培養(yang) 基，用無菌PBS輕輕洗滌細胞兩(liang) 次，以去除殘留的培養(yang) 基和死細胞。隨後，加入適量預溫的胰蛋白酶-EDTA溶液，覆蓋細胞表麵，放入37℃、5% CO₂培養(yang) 箱中孵育約3-5分鍾，直至細胞間隙增大，形態變圓。

3. **細胞收集與(yu) 重懸**：輕輕拍打培養(yang) 皿底部，使細胞脫落，加入等體(ti) 積的新鮮培養(yang) 基終止胰酶作用，用移液槍輕輕吹打細胞懸液，確保細胞充分分散成單個(ge) 。

4. **細胞計數與(yu) 接種**：取少量細胞懸液進行計數，根據實驗需求調整細胞密度後，將適量的細胞懸液接種到新的培養(yang) 皿或培養(yang) 板中，輕輕搖晃使細胞均勻分布，然後放回培養(yang) 箱中繼續培養(yang) 。

5. **後續處理**：根據實驗目的，FaDu細胞可用於(yu) 多種實驗，如藥物敏感性測試、基因編輯、信號通路研究等。在接下來的步驟中，可能需要對細胞進行轉染、加藥處理或收集細胞進行分子生物學分析。每一步操作都需嚴(yan) 格遵循無菌原則，確保實驗結果的準確性和可靠性。

通過以上步驟，我們(men) 成功完成了FaDu細胞的傳(chuan) 代與(yu) 基本處理，為(wei) 後續深入研究奠定了堅實的基礎。