實驗規則：

1、要保證移液槍的準確性，誤差不能超過2%。可用水和電子天平進行確定。但有專(zhuan) 業(ye) 人員進行矯正。

2、要配備20ul、50ul、100ul、1000ul和排槍各一支。吸取不同的液體(ti) 後，要更換槍頭。即使是吸取標準品時。

3、要在實驗前1小時將試劑盒從(cong) 冰箱中取出，使各種試劑都恢複到室溫，以使結果更穩定。

4、實驗時，要使底物避光保存。

5、用槍吸取液體(ti) 時速度不能太快，以免產(chan) 生氣泡而使吸取量不準確。

6、吸取液體(ti) 時，要用量程和需要量接近的槍去吸，減少誤差。

7、將液體(ti) 加到酶標孔中時，避免槍頭和孔內(nei) 液體(ti) 接觸，可使槍頭上的液滴和孔壁接觸，液滴會(hui) 自然流下去。

8、液體(ti) 全部加完後，可將酶標板在桌子上平行輕輕晃動30秒，混勻液體(ti) 。也可以用酶標儀(yi) 的晃動功能。

9、應盡量做雙孔實驗，這樣才能保證數據的準確性。

10、對結果有疑問的樣品要用其它方法進行確證。

實時熒光定量PCR（quantitative real-time PCR，qPCR）是指在PCR反應體(ti) 係中加入熒光基團，利用熒光信號積累實時監測整個(ge) PCR進程，*通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。實時熒光定量PCR的化學原理包括探針類和非探針類兩(liang) 類，探針類是利用與(yu) 靶細胞序列特異性雜交的探針來指示擴增產(chan) 物的增加，非探針類是利用熒光染料或者特異性設計的引物來指示擴增的增加。運用該技術可以對DNA、RNA樣品進行定量（包括*定量和相對定量）和定性分析。